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如何用western blotting检测小分子蛋白?

请教WB高手,我现在做人β防御素2(hBD2)的WB检测,蛋白标本来自肺上皮细胞总蛋白提取液,我的分离胶用15%的胶,上样量为80ug/孔,电泳条件为70v(浓缩胶)、120v(分离胶),电泳后marker在胶上清晰可见,最小分子量的一条marker为10kd也可以清楚看到,我的目的蛋白hBD2分子量为7kd(abcam一抗,说明书上提示该产品分子量为7kd),故电泳后切胶时,在10kd以下切1cm宽的胶进行转膜;“三明治”夹的搭建应该没有问题;我的转膜条件为:湿转,300mA,50min,用的膜是0.22um PVDF膜(millipore);5%脱脂牛奶室温封闭1.5h;abcam一抗1:750 4°C孵育过夜,HPR标记二抗(进口分装)1:2000,室温孵育2h;洗膜均为TBST(含0.1%吐温)10min×3次;最后ECL发光(pierce公司产品),内参选用GAPDH,内参条带非浓,很容易曝光,但是目的蛋白至今未能做出来(已经近1个月了),不知哪些步骤需要改进?期待回复,非常感谢!

另外说明一下,我提取的总蛋白,做其他指标(分子量为100kd,转膜条件为300mA,1.5h,用的膜为0.45um)是有条带的,可是是做hBD2没有任何条带让我看到!


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共1个回答
其实,你的问题就是确定一个合适的转印条件。我一般做WB的习惯是,湿转(Biorad),110 mA,60 min,转印液不加SDS。这个条件可以保证30 KD--120 KD的蛋白都能转印成功。像7 KD这样小的蛋白,建议0.22的PVDF膜,湿转90 mA,30min。以预染marker 10 KD条带为参照物判断转印情况。PS:背景深,基本上就两个原因:1. 封闭不彻底,可能脱脂乳溶解的不好,也可能封闭时间不够。2. 二抗浓度高了,一般ECL-WB二抗的浓度要求很低,1:10000就可以了,如果条带发光弱,就提高到1:5000。洗二抗时一定要多洗几次,3次肯定是不够的。
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